Uso de sangra d’água na inibição de crescimento de Sclerotium rolfsii e Macrophomina phaseolina

Bruno Paiva; Gilsayne de Araujo Bitencourt; Stephany dos Santos; Felipe André Sganzerla Graichen

doi:10.17765/2176-9168.2025v18e12443

Autores

Bruno Paiva Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul https://orcid.org/0000-0002-7834-3957
Gilsayne de Araujo Bitencourt Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul https://orcid.org/0000-0001-7215-1754
Stephany dos Santos Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul https://orcid.org/0000-0001-8672-7355
Felipe André Sganzerla Graichen Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul https://orcid.org/0000-0003-0516-5042

DOI:

https://doi.org/10.17765/2176-9168.2025v18e12443

Palavras-chave:

Compostagem, Estrato vegetal, Podridão cinzenta, Podridão-de-escleródio, Solanum lycopersicum L

Resumo

Os fungos Sclerotium rolfsii e Macrophomina phaseolina são patógenos radiculares, pouco específicos que causam doenças em um número grande de plantas. O manejo destas doenças é difícil devido a produção de estruturas resistência que garantem sua sobrevivência por longos tempo. A sangra d’água (Croton urucurana) apresenta atividade alelopática com potencial de ser utilizada como substrato na compostagem e na redução da intensidade de doenças radiculares. Assim, o objetivo deste trabalho foi avaliar a inibição do crescimento de S. rolfsii e M. phaseolina com o uso do extrato aquoso de sangra d’água e o efeito do composto de sangra d’água sobre a podridão de escleródio em tomateiro. O efeito inibitório do extrato aquoso de sangra dágua sobre o crescimento dos fungos foi avaliado pela adição de diferentes doses ao meio de cultura em que os fungos foram crescidos. Apenas a maior concentração (30 g de folhas.100 mL^-1) inibiu o crescimento de S. rolfsii. Não foi observado efeito inibitório sobre o crescimento de M. phaseolina em nenhuma das doses. Outro experimento foi realizado com composto orgânico de folhas de sangra d‘água incorporado ao substrato para a produção de mudas de tomateiro. Aos 21 dias após a semeadura foi realizada a inoculação do S. rolfsii. Foi avaliado a massa seca e verde da parte aérea e raiz e população de S. rolfsii no substrato. A incorporação do composto orgânico tem efeito na redução da população de S. rolfsii no substrato, no entanto o composto não reduziu a mortalidade das plantas.

Biografia do Autor

Bruno Paiva, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul

Mestre em Agronomia pelo Programa de Pós-Graduação em Agronomia da Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, Aquidauana (MS), Brasil.

Gilsayne de Araujo Bitencourt, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul

Doutora, Docente temporário do curso de Ciências Biológicas da Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, Coxim (MS), Brasil.

Stephany dos Santos, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul

Doutoranda do Programa de Pós-Graduação em Agronomia da Universidade Estadual oe Mato Grosso do Sul, Aquidauana (MS), Brasil.

Felipe André Sganzerla Graichen, Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul

Doutor em Fitotecnia pela Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Docente Permanente do Programa de Pós-Graduação em Agronomia da Universidade Estadual do Mato Grosso do Sul, Aquidauana (MS), Brasil.

Referências

ALI AL-HAKAMI, I.; RAWEH, S.; EL-SHAIBANY, A.; HUMAID, A.; ELAASSER, M. A review of biological activities of genus Croton. PSM Microbiology, Pakistan, v. 7, n. 1, p. 12–18, 2022. Disponível em: https://journals.psmpublishers.org/index.php/microbiol.

ALMEIDA, M. L. dos S.; OLIVEIRA, A. S.; CARVALHO, G. S.; DA SILVA, L. S.; SILVA, L. B.; DOS SANTOS, E. C. B.; CASARIN, F. E. Toxicity of Croton urucurana against the subterranean termite Heterotermes sulcatus (Isoptera: Rhinotermitidae). J. Entomol., Faisala?ba?d, v. 13, n. 1–2, p. 48–54, 2016. DOI: https://doi.org/10.3923/je.2016.48.54

BENICIO, V.; ARAÚJO, E.; SOUTO, F. M. de; BENICIO, M. J.; FELISMINO, D. C. Identificação e características culturais de espécies do gênero Aspergillus isoladas de sementes de feijão no Estado da Paraíba. Fitopatol. Bras., Brasília - DF, v. 28, n. 2, p. 180–183, 2003. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-41582003000200011

BENSON, D. M.; OWNLEY, B. H. Laboratory exercise with soilborne plant pathogens. In: TRIGIANO, R. N.; WINDHAM, A.; WINDHAM, M. (org.). Plant pathology: concepts and laboratory exercises. 2. ed. Bosa Roca,: Taylor & Francis Inc, 2006. p. 235–251.

BISSACOTTI, A. P.; LONDERO, P. M. G.; COSTABEBER, I. H. Tomate: botânica, produção, composição nutricional e benefícios à saúde. Cad. Ciê. Tecnol., Brasília - DF, v. 38, n. 2, p. 26643, 2021. DOI: https://doi.org/10.35977/0104-1096.cct2021.v38.26643

BLANCO, N. H. M.; BARBOSA, D. F. R.; GRAICHEN, F. A. S. Antagonistic microorganisms and nitrogen fertilization in control of tomato southern blight. Arq. Inst. Biol, São Paulo - SP, v. 88, p. 1–9, 2021. DOI: https://doi.org/10.1590/1808-1657000502019

CÂNDIDO-BACANI, P. D. M.; FIGUEIREDO, P. D. O.; MATOS, M. D. F. C.; GARCEZ, F. R.; GARCEZ, W. S. Cytotoxic orbitide from the latex of Croton urucurana. J. Nat. Prod., Gorakhpur, v. 78, n. 11, p. 2754–2760, 2015. DOI: https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.5b00724

COVENTRY, E.; NOBLE, R.; MEAD, A.; WHIPPS, J. M. Suppression of Allium white rot (Sclerotium cepivorum) in different soils using vegetable wastes. Eur. J. Plant Pathol., Dordrecht , v. 111, n. 2, p. 101–112, 2005. DOI: https://doi.org/10.1007/s10658-004-1420-0

FARIA, F. A.; BUENO, C. J.; PAPA, M. D. F. S. Atividade fungitóxica de Momordica charantia L. no controle de Sclerotium rolfsii Sacc. Acta Sci., Agron., Maringá - PR, v. 31, n. 3, p. 383–389, 2009. DOI: https://doi.org/https://doi.org/10.4025/actasciagron.v31i3.364

FONSECA, A. S.; FERNANDES, C. de F.; VIEIRA JÚNIOR, J. R.; ROCHA, R. B.; FREIRE, T. C.; SANGI, S. C.; BASTOS, J. S. F.; ALVES, R. C. Extratos vegetais do gênero Capsicum com potencial atividade antifúngica contra Rhizoctonia solani e Sclerotium rolfsii. Revista Ibero-Americana de Ciências Ambientais, Aracaju - SE, v. 11, n. 1, p. 89–98, 2020. DOI: https://doi.org/10.6008/CBPC2179-6858.2020.001.0010

GURGEL, L. A.; SIDRIM, J. J. C.; MARTINS, D. T.; FILHO, V. C.; RAO, V. S. In vitro antifungal activity of dragon’s blood from Croton urucurana against dermatophytes. J. Ethnopharmacol., Limerick, v. 97, n. 2, p. 409–412, 2005. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2004.11.033

HYDER, S.; GONDAL, A. S.; AHMED, R.; SAHI, S. T.; REHMAN, A.; HANNAN, A. First Report of Charcoal Rot in Tomato Caused by Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. From Pakistan. Plant Dis., Saint Paul - MN, v. 102, n. 7, p. 1459, 2018. DOI: https://doi.org/10.1094/PDIS-10-17-1663-PDN

KATOR, L.; DANIEL OCHE, O.; YULA HOSEA, Z. Incidence and severity of Sclerotium rolfsii disease on tomato farms in Chile Island (Makurdi), Benue State, Nigeria. IOSR Journal of Agriculture and Veterinary Science Ver. II, Ghaziabad, v. 8, n. 11, p. 2319–2372, 2015. DOI: http://dx.doi.org/10.9790/2380-0811297103

LODHA, S.; MAWAR, R. Population dynamics of Macrophomina phaseolina in relation to disease management: A review. J. Phytopathol., Berlin, v. 168, n. 1, p. 1–17, 2020. DOI: https://doi.org/10.1111/jph.12854

LOPES ALVES, J. J.; DIAS, M. I.; BARREIRA, J. C. M.; BARROS, L.; RESENDE, O.; RIBEIRO AGUIAR, A. C.; FERREIRA, I. C. F. R. Phenolic profile of Croton urucurana Baill. leaves, stems and bark: pairwise influence of drying temperature and extraction solvent. Molecules, Basel, v. 25, n. 9, p. 2032, 2020. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules25092032

MARCANO, D. A. de; VARGAS, N.; PIRE, A. Efecto de extractos vegetales y fungicidas sintéticos sobre el crecimiento micelial in vitro de Sclerotium rolfsii y Thielaviopsis basicola. Ver. Fac. Agron., Caracas, v. 22, n. 4, p. 315–324, 2005.

MARCUZZO, L. L.; SCHULLER, A. Sobrevivência e viabilidade de escleródios de Sclerotium rolfsii no solo. Summa Phytopathol., Botucatu – SP, v. 40, n. 3, p. 281–283, 2014. DOI: https://doi.org/10.1590/0100-5405/1951

MARQUEZ, N.; GIACHERO, M. L.; DECLERCK, S.; DUCASSE, D. A. Macrophomina phaseolina: General Characteristics of Pathogenicity and Methods of Control. Front. Plant Sci., Lausanne, v. 12, n. 634397, 2021. DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2021.634397

MARTÍNEZ-SALGADO, S. J.; ANDRADE-HOYOS, P.; PARRAGUIRRE LEZAMA, C.; RIVERA-TAPIA, A.; LUNA-CRUZ, A.; ROMERO-ARENAS, O. Biological control of charcoal rot in peanut crop through strains of trichoderma spp., in puebla, Mexico. Plants, v. 10, n. 12, 2021. DOI: https://doi.org/10.3390/plants10122630

MORALES-UBALDO, A.; HERNÁNDEZ-ALVARADO, J.; VALLADARES-CARRANZA, B.; VELÁZQUEZ-ORDOÑEZ, V.; DELGADILLO-RUIZ, L.; ROSENFELD-MIRANDA, C.; RIVERO-PÉREZ, N.; ZARAGOZA-BASTIDA, A. Antibacterial activity of the Croton draco hidroalcoholic extract on bacteria of sanitary importance. Abanico Veterinario, Tepic, v. 10, n. 1, 2020. DOI: https://doi.org/10.21929/abavet2020.2

MORI, M. Efeito do pH e de diferentes fontes de N na supressão de Sclerotium rolfsii em tomateiro. 2015. Dissertação (Mestrado em Agronomia, Produção Vegetal) - Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, Aquidauana - MS, 2015.

NOGUEIRA, G. A.; SILVA, S. G. A.; LINHARES, C. M. S.; AMBRÓSIO, M. M. Q.; NUNES, G. H. S. Métodos de inoculação de Fusarium solani e Sclerotium rolfsii em meloeiro. Summa Phytopathol., Botucatu, v. 45, n. 1, p. 59–63, 2019. DOI: https://doi.org/10.1590/0100-5405/187147

OLIANI, J.; FERREIRA, M. J. P.; SALATINO, A.; SALATINO, M. L. F. Leaf flavonoids from Croton urucurana and C. floribundus (Euphorbiaceae). Biochem. Syst. Ecol., Oxford, v. 94, 2021. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bse.2020.104217

PAIVA, B.; GRAICHEN, F. A. S.; DIAS, A. R.; FERNANDES, F. M. Podridão de esclerótio em espécies florestais. Revista de Ciências Agroambientais, Alta Floresta - MT, v. 18, n. 2, p. 104–110, 2020. DOI: https://doi.org/10.5327/rcaa.v18i2.3727

PANE, C.; PICCOLO, A.; SPACCINI, R.; CELANO, G.; VILLECCO, D.; ZACCARDELLI, M. Agricultural waste-based composts exhibiting suppressivity to diseases caused by the phytopathogenic soil-borne fungi Rhizoctonia solani and Sclerotinia minor. App. Soil Ecol., Amsterdam, v. 65, p. 43–51, 2013. DOI: https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2013.01.002

PIRES, I. C. G.; FERRÃO, G. E. Compostagem no Brasil sob a perspectiva da legislação ambiental. Revista Trópica: Ciências Agrárias e Biológicas, São Luís, v. 9, n. 01, p. 1–18, 2017.

PORTILLO, A.; VILA, R.; FREIXA, B.; ADZET, T.; CAÑIGUERAL, S. Antifungal activity of Paraguayan plants used in traditional medicine. J. Ethnopharmac., Lausanne, v. 76, n. 1, p. 93–98, 2001. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-8741(01)00214-8

PUNJA, Z. K. The biology, ecology, and control of Sclerotium rolfsii. Ann. Rev. Phytopathol., Palo Alto - CA, v. 23, n. 1, p. 97–127, 1985. DOI: https://doi.org/https://doi.org/10.1146/annurev.py.23.090185.000525

QUEIROZ, T. N.; PASCUALI, L. C.; SILVA, A. C. P.; PORTO, A. G.; CARVALHO, J. W. P. Extratos e óleos essenciais como alternativa no controle de Sclerotinia sclerotiorum e Sclerotium rolfsii isolados de soja (Glycine max L.). Revista em Agronegócio e Meio Ambiente, Maringá - PR, v. 13, n. 2, p. 737–753, 2020. DOI: https://doi.org/10.17765/2176-9168.2020v13n2p737-753

RODRIGUEZ-KABANA, R. A method for estimating numbers of viable sclerotia of Sclerotium rolfsii in soil. Phytopathology, Saint Paul - MN, v. 70, n. 9, p. 917–919, 1980. DOI: https://doi.org/10.1094/Phyto-70-917

TAN?I? ŽIVANOV, S.; DEDI?, B.; DIMITRIJEVI?, A.; DUŠANI?, N.; JOCI?, S.; MIKLI?, V.; KOVA?EVI?, B.; MILADINOVI?, D. Analysis of genetic diversity among Macrophomina phaseolina (Tassi) Goid. isolates from Euro-Asian countries. J. Plant Dis. and Prot., Stuttgart, v. 126, n. 6, p. 565–573, 2019. DOI: https://doi.org/10.1007/s41348-019-00260-6

TOMAZELI, V. N.; SANTOS, I. Dos; MORALES, R. G. F.; FIGUEIREDO, A. S. T. Soil solarization in the control of bean diseases caused by Sclerotium rolfsii. Brazilian Journal of Agriculture, Piracicaba - SP, v. 94, n. 1, p. 1–9, 2019. DOI: https://doi.org/10.37856/bja.v94i1.184

VENTORINO, V.; PARILLO, R.; TESTA, A.; VISCARDI, S.; ESPRESSO, F.; PEPE, O. Chestnut green waste composting for sustainable forest management: microbiota dynamics and impact on plant disease control. J. of Environ. Manag, London, v. 166, p. 168–177, 2016. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jenvman.2015.10.018