Antifungal effect of ethanolic extract of commelina erecta l. And richardia brasiliensis gomes

Authors

DOI:

https://doi.org/10.17765/2176-9168.2024v17n2e10975

Keywords:

Phytopathogens, Gray rot, Phaseolus vulgaris L., Erva-de-santa-luzia, Brazilian pusley

Abstract

Phytopathogens are problems in several crops of interest in Brazil due to the favorable climate in its plantations, especially in the Cerrado region of Mato Grosso do Sul. In this sense, the purpose of this study was to evaluate by spraying using Commelina erecta and Richardia brasiliensis plant extracts on the mycelial growth of Macrophomina phaseolina in bean plants of the carioca variety. The hydroalcoholic extracts were submitted to phytochemical analysis. To evaluate the antifungal activity in vivo, the test was developed via hand spraying the hydroalcoholic solutions of C. erecta and R. brasiliensis plants at concentrations of 800 µg/100 mL, 1200 µg/100 mL, and 1600 µg/100 mL. As a control, the plants were sprayed with water. After the application of the different concentrations on the bean leaves, the fungus was inoculated at the base of the stem, where it showed the progress of the disease. At the 800 µg/100 mL concentration, the disease control for C. erecta was 23.3%, and at the 1600 µg/100 mL concentration, the disease control for R. brasiliensis was 24.7%. The antifungal tendency of the hydroalcoholic extracts against M. phaseolina is attributed to several classes of secondary metabolites, mainly anthraquinones and steroids, with a higher percentage for the C. erecta extract. In addition, the ethanolic extract of the two plants has fungicidal potential and may be useful in M. phaseolina management programs.

Author Biographies

Eliane Rosa da Silva Dilkin, Instituto Federal de Mato Grosso do Sul

Docente no Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia de Mato Grosso do Sul (IFMS), campus Campo Grande (MS), Brasil.

Rosemary Matias Matias, Universidade Anhanguera-Uniderp, Brasil

Profa. Dra. Rosemary Matias, Química, Mestrado e Doutorado em Química pela Universidade Estadual de Maringá - UEM. Coordenadora e Professora do Programa de Pós-Graduação em Meio Ambiente e Desenvolvimento Regional e do Curso de Agronomia, Farmácia e Biomedicina da Universidade Anhanguera– Uniderp, Campo Grande, MS.

Ademir Kleber Morbeck de Oliveira Oliveira, Universidade Anhanguera-Uniderp, Brasil

Prof. Dr. Ademir Kleber Morbeck de Oliveira Prof. dos Programas Pós-Graduação: em Meio Ambiente e Desenvolvimento Regional e Mestrado em Produção e Gestão Agroindustrial da Universidade Anhanguera-Uniderp, Campo Grande, MS, e no Mestrado em Ciências Ambientais da Universidade de Cuiabá – UNIC, Cuiabá – MT.

Bianca Obes Corrêa Corrêa, Universidade Anhanguera-Uniderp, Brasil

Profa. Dra. Bianca Obes Correa, Bióloga, Mestrado e Doutorado em Fitossanidade pela Universidade Federal de Pelotas, Pós-Doutorado pelo Programa de Pós-Graduação em Fitossanidade na Universidade Federal de Pelotas-RS/ Brasil. Atua no Mestrado em Produção e Gestão Agroindustrial, Universidade Anhanguera–Uniderp, Campo Grande, MS, na área de Fitopatologia, atuando principalmente nos seguintes temas: controle biológico de doenças e promoção do crescimento vegetal pelo uso de bactérias, bacteriologia vegetal, uso de adubos verdes para o controle de patógenos habitantes do solo, uso de extratos de plantas para o controle alternativo. No Curso de Agronomia é responsável pela disciplina de fitopatologia. É Membro dos Comitês de Ética e do Colegiado da Pós-Graduação em Produção e Gestão Agroindustrial.

References

ABAWI, G. S.; PASTOR CORRALES, M. A. Root rots of beans in Latin America and Africa; diagnosis, research methodologies and management strategies. Colombia: CIAT, 1990.

ALMEIDA, Á. M. R.; SEIXAS, C. D. S.; FARIAS, J. R. B.; OLIVEIRA, M. C. N.; FRANCHINI, J. C.; DEBIASI, H.; COSTA, J. M.; GAUDÊNCIO, C. A. Macrophomina phaseolina em soja. Londrina: Embrapa Soja-Documentos (INFOTECA-E), 2014. 55p.

CELOTO, M. I. B.; PAPA, S. F. M.; SACRAMENTO, S. U. L.; CELOTO, J. F. Atividade antifúngica de extratos de plantas a Colletotrichum gloeosporioides. Acta Scientiarum Agronomy, Maringá, v. 30, n. 1, p. 1-5, 18 mar. 2008. DOI: https://doi.org/10.4025/actasciagron.v30i1.1104

CHARLES, D. D.; JULIENNE, N.; BLAISEA, D. L. J.; HUBERT, G. Y. J.; RENÉA, A. U.; IRÉNÉEC, S.; HENRYA, A. Z. P. Antifungal potential of essential oils, aqueous and ethanol extracts of thirteen plants against Fusarium oxysporum f. sp Lycopersici and Phytophtora infestans (Mont.) de Bary as major tomato pathogens in Cameroon. International Journal of Dourados, MS, Brasil. Interações, Campo Grande, v. 18, n. 1, p. 3-15, 2017. Disponível em:
file:///C:/Users/User/Downloads/Dakoleetal.2016%20(1).pdf. Acesso em: 24 jul. 2019.

CHOZE, R.; DELPRETE, P. G.; LIÃO, L. M. Chemotaxonomic significance of flavonoids, coumarins and triterpenes of Augusta longifolia (Spreng.) Rehder, Rubiaceae-Ixoroideae, with new insights about its systematic position within the family. Brazilian Journal of Pharmacognosy, Curitiba, v. 20, n. 3, p. 295-299, jun./jul. 2010. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-695X2010000300002

DILKIN, E. R. S. Potencial fungitóxico de plantas invasoras de culturas agrícolas e pastagens do estado de Mato Grosso do Sul. 2020. 140f. Tese (Doutorado em Meio Ambiente e Desenvolvimento Regional) – Universidade Anhanguera – Uniderp, Campo Grande.

FIGUEIREDO, A. D. L.; BUSTAMANTE, K. G. L.; SOARES, M. L.; BARA, M. T. F.; REZENDE, M.H.; FERREIRA, H.D.; FIUZA, T.S.; TRESVENZOL, L.M.F.; Paula, J. R. Determinação de Parâmetros para Controle de Qualidade da Richardia brasiliensis (Rubiaceae). Latin American Journal of Pharmacy, Buenos Aires, v. 29, n. 2, p.192-197, 06 abr. 2010. Disponível em: http://sedici.unlp.edu.ar/handle/10915/7894. . Acesso em: 06 jun. 2019.

GOBBO-NETO, L.; LOPES, N. P. Plantas medicinais: fatores de influência no conteúdo de metabólitos secundários. Química Nova, São Paulo, v. 30, n. 2, p. 374-381, 13 mar. 2007. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-40422007000200026

ISHIKAWA, M. S.; RIBEIRO, N. R.; OLIVEIRA, E. C.; ALMEIDA, A. A. BALBI-PEÑA, M. I. Seleção de cultivares de soja para resistência à podridão negra da raiz (Macrophomina phaseolina). Summa Phytopathologia, Botucatu, v. 44, n. 1, p. 38-44, jan./mar. 2018. DOI: https://doi.org/10.1590/0100-5405/178653

JURASEKOVA, Z.; GARCIA?RAMOS, J. V.; DOMINGO, C.; SANCHEZ?CORTES, S. Surface?enhanced Raman scattering of flavonoids. Journal of Raman Spectroscopy: An International Journal for Original Work in all Aspects of Raman Spectroscopy, Including Higher Order Processes, and also Brillouin and Rayleigh Scattering, Massachusetts, v. 37, n. 11, p. 1239-1241, 04 out. 2006. DOI: https://doi.org/10.1002/jrs.1634

KUPPUSAMY, P.; YUSOFF, M. M.; PARINE, N. R.; GOVINDAN, N. Evaluation of in-vitro antioxidant and antibacterial properties of Commelina nudiflora L. extracts prepared by different polar solvents. Saudi Journal of Biological Sciences, Riyadh, v. 22, n. 3, 293-301, mai. 2015. DOI: https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2014.09.016

MATIAS, R.; CANALE, F. S.; CORRÊA, B. O.; BONO, J. A. M.; OLIVEIRA, A. K. M.; DOURADO, D. M.; PEDRINO, D. R. Chemical constituents and antifungal potential of the Richardia brasiliensis (Gomes) ethanolic extract. Tropical and Subtropical Agroecosystems, Yucatán, v. 21, n. 3, p. 457-465, 2018. Disponível em: https://www.revista.ccba.uady.mx/ojs/index.php/TSA/article/view/2500/1169. Acesso em: 3 jun. 2019.

MATOS, F. J. A. Introdução a fitoquímica experimental. 2. ed. Fortaleza: Universidade Federal do Ceará. 2009.

MENGISTU, A.; ARELLI, P.; BOND, J.; NELSON, R.; RUPE, J.; SHANNON, G.; WRATHER, A. Identification of soybean accessions resistant to Macrophomina phaseolina by field screening and laboratory validation. Plant Health Progress, Saint Paul, v. 14, n. 1, p. 25, 27 jul. 2013. DOI: https://doi.org/10.1094/PHP-2013-0318-01-RS


NICHOLSON, R. L.; HAMMERSCHMIDT, R. Phenolic compounds and their role in disease resistance. Annual review of phytopathology, Palo Alto, v. 30, n. 1, p. 369-389, 1992. Set. 1992. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.py.30.090192.002101. Acesso em: 06 jun. 2019.

PASCHOLATI, S.F.; LEITE, B. Mecanismos bioquímicos de resistência às doenças. Revisão Anual de Patologia de Plantas, Passo Fundo, v. 2, p. 1-51. 12 ago. 1994.

PEIXOTO SOBRINHO, T. J. S.; SILVA, C. H. T. P.; NASCIMENTO, J. E.; MONTEIRO, J. M.; ALBUQUERQUE, U. P.; AMORIM, E. L. C. Validação de metodologia espectrofotométrica para quantificação dos flavonoides de Bauhinia cheilantha (Bongard) Steudel. Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, São Carlos, v. 44, n. 4, p. 683-689, out./dez. 2008. DOI: https://doi.org/10.1590/S1516-93322008000400015

RAHMOUN, N. M.; BOUCHERIT-OTMANI, Z.; BOUCHERIT, K.; BENABDALLAH, M.; VILLEMIN, D.; CHOUKCHOU-BRAHAM, N. Antibacterial and antifungal activity of lawsone and novel naphthoquinone derivatives. Medecine et Maladies Infectieuses, Amsterdã, v. 42, n. 6, p. 270-275, 7 jun. 2012. DOI: https://doi.org/10.1016/j.medmal.2012.05.002

RAHMOUN, N.; BOUCHERIT-OTMANI, Z.; BOUCHERIT, K.; BENABDALLAH, M.; CHOUKCHOU-BRAHAM, N. Antifungal activity of the Algerian Lawsonia inermis (henna). Pharmaceutical Biology, London, v. 51, n. 1, p. 131-135, 2013. Jul./nov. 2012. DOI: https://doi.org/10.3109/13880209.2012.715166

RIBERA, A. E.; ZUÑIGA, G. Induced plant secondary metabolites for phytopatogenic fungi control: a review. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, Chile, v. 12, n. 4, p. 893-911, 1 dez. 2012. DOI: http://dx.doi.org/10.4067/S0718-95162012005000040

SILVERSTEIN, R. M.; WEBSTER, F. X.; KIEMLE, D.; BRYCE, D. Spectrometric identification of organic compounds. 8. ed. New Jersey: John Wiley e Sons, 2014.

SIMÕES, C. M. O.; SCHENKEL, E. P.; MELLO, J. C. P.; MENTZ, L. A.; PETROVICK, P. R. Farmacognosia: do produto natural ao medicamento. Porto Alegre: Artmed., 2017.

SIQUEIRA, I. T. D. D.; CRUZ, L. R.; SOUZA-MOTTA, C. M. D.; MEDEIROS, E. V. D.; MOREIRA, K. A. Induction of acibenzolar-S-methyl resistance in cowpea to control anthracnose. Summa Phytopathologica, Piracicaba, v. 45, n. 1, p. 76-82, jan./ab. 2019. DOI: https://doi.org/10.1590/0100-5405/185029

SOUSA, C. D. M.; SILVA, H. R.; VIEIRA-JR, G. M.; AYRES, M. C. C.; COSTA, C. D.; ARAÚJO, D. S.; CAVALCANTE, L. C. D.; BARROS, E. D. S.; ARAÚJO, P. B. M.; BRANDÃO, M. S.; CHAVES, M. H. Fenóis totais e atividade antioxidante de cinco plantas medicinais. Química Nova, São Paulo, v. 30, n. 2, p. 351-355, 13 mar. 2007. DOI: https://doi.org/10.1590/S0100-40422007000200021

SOUZA, F. H. T. Estudos fitoquímicos e farmacobotânico de Richardia brasiliensis Gomes (Rubiaceae). 2009. 194f. Dissertação (Mestrado em Produtos Naturais Sintéticos Bioativos) -Universidade Federal da Paraíba, João Pessoa.

SOUZA, R. K. D.; MENDONÇA, A. C. A. M.; PESSOA DA SILVA, M. A. Aspectos etnobotánicos, fitoquímicos y farmacológicos de espécies de Rubiaceae en Brasil. Revista Cubana de Plantas Medicinales, Habana, v. 18, n. 1, p. 140-156, mar. 2013. Disponível em:
http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1028-47962013000100016. Acesso em: 12 mar. 2019.

TADESSE, S.; GANESAN, K.; NAIR, S. K. P.; LETHA, N.; GANI, S. B. PRELIMINARY PHYTOCHEMICAL SCREENING OF DIFFERENT SOLVENT EXTRACTS OF LEAVES AND STEMS OF COMMELINA BENGHALENSIS L (FAMILY: COMMELINACEAE). International Journal of Pharmaceutical, Chemical e Biological Sciences, West Bengal, v. 6, n. 1, p. 103-107, 2016. Disponível em: https://www.researchgate.net/publication/329208557_Preliminary_phytochemical_screening_of_different_solvent_extracts_of_leaves_and_stems_of_Commelina_Benghalensis_L_Family_Commelinaceae. Acesso em: 12 mar. 2019.

Published

2024-07-05

How to Cite

Dilkin, E. R. da S. ., Matias, R. M., Oliveira, A. K. M. de O., & Corrêa, B. O. C. (2024). Antifungal effect of ethanolic extract of commelina erecta l. And richardia brasiliensis gomes. Revista Em Agronegócio E Meio Ambiente, 17(2), e10975. https://doi.org/10.17765/2176-9168.2024v17n2e10975

Issue

Section

Environment